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產品名稱:

A431-A人表皮癌細胞

產品型號: 產品時間: 2019-02-22
A431-A人表皮癌細胞
細胞培養的基本原理與技術 現代生物技術一般認為包括基因工程技術、細胞工程技術、酶工程技術和發酵工程技術,而這些技術的發展幾乎都與細胞培養有密切關系,特別是在醫藥領域的發展,細胞培養更具有特殊的作用和價值。

產品概述

A431-A人表皮癌細胞

【背景資料】 見細胞說明書

【產品來源】 細胞主要來源ATCC、DSMZ、ECACC、RIKEN、promocell、ScienCell、ECACC、JCRB、KCLB、Asterand、ICLC以及少數國內外著名大學建系

"公司提供貼壁、半貼壁、懸浮、半懸浮、貼壁與懸浮混合等細胞特性,一般細胞培養PBS量是10%,如果出現細胞狀態不良情況,可以提高PBS量到15%,SHEE人永生化食管上皮細胞待細胞穩定后,調回PBS量10%,對于初次實驗者,一般細胞培養,都需要加入雙抗防止細胞污染,細胞匯合度達到90%,我們開始寄送,這樣可以保持細胞收到時,良好的細胞活力。

一、售前
         杭州仟諾生物專業為國內科研提供高品質細胞和優質服務,QC檢測合格后發貨保證細胞狀態良好,發貨前保證質量。
 
二、售后
         收到細胞7天內出現狀態不佳等情況請及時反饋,會有技術同步指導操作協助解決,如仍未養活免費重發。建議及時保種,有備無患!
 
三、細胞生長條件:

培養條件   

GIBCO(培養基90% +10%FBS)

溫度                   

                    37℃

空氣條件  

5% CO2,,95% AIR

傳代方法

1:2傳代,2~3天換液

凍存條件

90%FBS+10%DMSO

 
四、細胞收到后處理
    細胞在培養瓶中培養至良好狀態后灌滿完全培養液并封好瓶口是細胞運輸的zui好辦法。收到細胞回到自己的實驗室后,先打開外包裝,用75%酒精噴灑整個瓶消毒后放到超凈臺內,嚴格無菌操作。鏡下觀察:未超過80%匯合度時,可將瓶裝的完全培養液移入廢液缸中,原瓶(T25瓶)保留6-8ml完全培養液,懸浮細胞需離心處理,放入37℃、5%CO2孵箱培養;超過80%匯合度時,根據情況傳代或者凍存,具體操作見細胞培養步驟。
 
五、細胞培養步驟
1)復蘇細胞:將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入5mL培養基混合均勻。在1000RPM條件下離心5分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養瓶中培養過夜(或將細胞懸液加入6cm皿中,加入約6ml培養基,培養過夜)。第二天換液并檢查細胞密度。
2)細胞傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養。
 
1、貼壁細胞,傳代參考如下:
①。 棄去培養上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
②. 加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養瓶中,置于37℃培養箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養瓶后加少量培養基終止消化。
③. 按6-8ml/瓶補加培養基,輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心5分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻。
 
④. 將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。

2、懸浮細胞,傳代參考如下:

方法①:收集細胞,1000RPM條件下離心5分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻,將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。
方法②:可選擇半數換液方式,棄去半數培養基后,將剩余細胞懸起,將細胞懸液按1:2到1:3的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。
 
3)細胞凍存:待細胞生長狀態良好時,可進行細胞凍存。貼壁細胞凍存時,棄去培養基后加入少量胰酶,細胞變圓脫落后,進行離心收集,1000RPM條件下離心5分鐘,去除上清,按凍存數量加入血清及DMSO,凍存比例為90%FBS+10%DMSO。
 

A431-A人表皮癌細胞

   剛收到細胞時,胎牛血清可以用15%培養兩三天,利于細胞盡快恢復狀態,細胞穩定后
再調回10%即可
   收到細胞后如細胞狀態不佳,或培養中遇到問題,煩請當天盡快聯系,以便處理。當天及時反饋細胞情況和細胞照片是售后跟蹤處理重要參考依據,請您務必重視。

1. 為什么培養的細胞要及時傳代?
    答:體外培養的細胞大多具有生長接觸抑制的特性,也就是說當一個細胞被其他細胞包圍的時候,它就會停止生長,及時傳代后,細胞的生長得以繼續。
2.培養液pH下降很快可能原因有哪些?其解決辦法是什么?
    答:通常細胞生長得非常快時,pH值通常下降得很快。此時可以及時傳代、提高傳代比例或降低血清量等方法進行解決。此外,培養瓶蓋擰得太緊、NaHCO3 緩沖系統緩沖能力不夠、培養液中鹽濃度不正確、細菌、酵母或真菌污染等也能導致pH值通常下降得很快。
       (1)按培養液中NaHCO3 濃度增加或減少培養箱內CO2 濃度,2.0g/L 到3.7g/L 濃度NaHCO3對應CO2濃度為5%到10%。
       (2)改用不依賴CO2培養液。
       (3)松開瓶蓋1/4 圈。加HEPES 緩沖液至10 到25mM終濃度。
       (4)在CO2 培養環境中改用基于Earle′s 鹽配制的培養液,在大氣培養環境中培養改用Hanks 鹽配制的培養液。
       (5)如果是污染造成的則丟棄培養物或用抗生素除菌。
3.培養液pH對細胞生長的影響?
    答:由于大多數細胞適宜pH為7.2-7.4,偏離此范圍可能對細胞生長將產生有害的影響。但各種細胞對pH的要求也不完全相同,原代培養細胞一般對pH變動耐受差,無限細胞系耐受力強。但總體來說,細胞耐酸性比耐堿性強一些。在配制培養用液時,需要注意一點:培新配的培養基在經過0.10um或0.22um濾膜過濾時,溶液的pH還會向上浮動0.2左右。
4.購買之細胞冷凍管經解凍后,為何會發生細胞數目太少之情形?
    答:研究人員在冷凍細胞之培養時出現細胞數目太少,大都是因為離心過程操作上的失誤,造成細胞的物理性損傷,以及細胞流失。建議細胞解凍后不要立刻離心,應待細胞生長隔夜后再更換培養基即可。但對于DMSO敏感的細胞,還是復蘇細胞時,用離心去除DMSO比較好。
5.購買之細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因?
    答:研究人員在細胞培養時出現存活率不佳,原因比較復雜,常見原因可歸納為:培養基使用錯誤或培養基品質不佳;血清使用錯誤或血清的品質不佳;解凍過程錯誤;冷凍細胞解凍后,加以洗滌細胞和離心;懸浮細胞誤認為死細胞;培養溫度使用錯誤;細胞置于–80 ℃太久等。建議嚴格參照ATCC或ECACC的標準操作規程進行細胞復蘇、凍存等工作。
6.支原體污染會對細胞培養有何影響?
    答:支原體污染幾乎可影響所有細胞之生長參數、代謝及研究之任一數據。故進行實驗前,必須確認細胞為mycoplasma-free,實驗結果之數據方有意義。
7.冷凍保存細胞之方法?
    答:冷凍保存方法一: 冷凍管置于4℃(30-60 分鐘)→-20℃( 30 分鐘) → -80℃(16-18 小時或隔夜)→ 液氮罐長期儲存。
冷凍保存方法二: 冷凍管置于已設定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3℃至–80 ℃以下, 再放入液氮中長期儲存。注意:-20℃不可超過1 小時,以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80℃冰箱中,惟存活率稍微降低一些。
 
8。懸浮細胞應如何繼代處理?
    答:一般僅需持續加入新鮮培養基于原培養瓶中,稀釋細胞濃度即可。若培養液太多時可分瓶取出一部份含細胞之培養液至另一新的培養瓶中,加入新鮮培養基稀釋至適當濃度,重復前述步驟即可。
9。欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應為多少轉速?
    答:欲回收動物細胞,其離心速率一般為300×g (約1,000rpm),5 - 10 分鐘,過高之轉速過長時間都將造成細胞死亡。合適的離心轉速是根據相對離心決定。 RCF=1.119×105×r×(rpm)2,其中 r為離心機轉軸中心與離心套管底部內壁的距離;rpm為離心機每分鐘的轉數;RCF(relative eentrifugal force)為相對離心力,以重力加速度g(980.66cm/s2)的倍數來表示表示單位。
10。培養細胞時應使用5%還是10%CO2,或者根本沒有影響?
    答:一般培養基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作為pH 的緩沖系統, 而培養基中NaHCO3的含量將決定細胞培養時應使用的CO2濃度。當培養基中NaHCO3 含量為每公升3.7g時,細胞培養時應使用10% CO2;當培養基中NaHCO3為每公升1.5g時,則應使用5%CO2培養細胞。
11.細胞冷凍管解凍培養時,是否應馬上去除DMSO?
    答:除少數特別注明對DMSO敏感之細胞外,絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞),在解凍之后,應直接放入含有10-15ml新鮮培養基之培養方瓶中,待隔天再置換新鮮培養基以去除DMSO即可,如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附之問題。
12.冷凍管應如何解凍?
    答:取出冷凍管后,須立即放入37℃水槽中快速解凍,輕搖冷凍管使其在1-2 分鐘內大部分融化,特別注意,需殘留一小塊冰塊,就可拿到超凈工作臺操作細胞,用75%消毒凍存管,用新鮮培養基將細胞轉移至培養瓶。另外冷凍管由液氮桶中取出解凍時,必須注意安全,預防冷凍管之爆裂

13.如何用臺盼蘭計數活細胞?

    答:將樣品適當稀釋后,用稀釋后的樣品和0.4%的臺盼蘭溶液按1:1混合后,用移液槍點樣到血球計數板,置于倒置顯微鏡下觀察、計數,其中藍色細胞是死細胞,因活細胞排斥臺盼蘭,不被染色。
14.細胞欲冷凍保存時,細胞冷凍管內應有多少細胞濃度?
    答:冷凍管內細胞數目一般為1-8×106 cells/ml vial。
15.細胞冷凍培養基之成份為何?
    答:動物細胞冷凍保存時最常使用的冷凍培養基是含9 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 % 原來細胞生長用之新鮮培養基均勻混合之。注意:由于DMSO 稀釋時會放出大量熱能,故不可將DMSO 直接加入細胞液中,必須使用前先行配制完成。
16.如何消除組織培養的污染?
    答:當重要的培養細胞污染時,研究者可能試圖消除或控制污染。首先,確定污染物是細菌、真菌、支原體或酵母,把污染細胞與其它細胞系隔離開,用實驗室消毒劑消毒培養器皿和超凈臺,檢查HEPA過濾器。
  高濃度的抗生素和抗霉菌素可能對一些細胞系有毒性,因而,做劑量反應實驗確定抗生素和抗霉菌素產生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養污染的實驗步驟。
1)在無抗生素的培養基中消化、計數和稀釋細胞,稀釋到常規細胞傳代的濃度。

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